Treóznukleinsav

treózalapú xenonukleinsav

A treóznukleinsav (más néven l-treofuranozil-nukleinsav[1] (TNS) xenonukleinsav, ahol az RNS-ben található természetes ribóz helyén nem természetes treóz található.[2] Albert Eschenmoser fedezte fel az RNS kémiai etiológiájának vizsgálatakor,[3] Fontos szintetikus genetikai polimer (XNS) lett, mivel a komplementer DNS- és RNS-szekvenciákkal könnyen alkot bázispárt.[2] A fő különbség a cukor: a DNS és az RNS foszfátjai a dezoxiribóz vagy ribóz 5’-szénatomján van, a TNS esetén azonban a 3’-szénatomon, mivel nincs 5’-szén. E módosult váz révén a nukleázok nem bontják le,[4] így terápiás és diagnosztikai használatra megfelelő lehet.[5]

A TNS-oligonukleotidokat először automatikus szilárd fázisú szintézissel állították elő foszforamiditekkel. A kémiailag szintetizált TNS-monomereket (foszforamiditek és nukleozid-trifoszfátok) erősen optimalizálták a TNS-kutatást előrevivő szintetikus biológiai projektekre.[6] 2019-ben előállítottak DNS és TNS közt genetikai információt másolóTNS-polimerázokat.[7][8] A TNS-replikáció az RNS-replikációhoz hasonlóan történik. Itt a TNS visszaíródik DNS-re, annak mennyisége polimeráz-láncreakcióval nő, majd átíródik TNS-re.

A TNS-polimerázok elérhetősége lehetővé tette a biológiailag stabil TNS-aptamerek in vitro kiválasztását kismolekulás és fehérjecélpontokhoz is.[9][10][11] Az ilyen kísérletek bizonyítják, hogy az öröklődés és evolúció nem korlátozódik a természetes DNS- és RNS-polimerekre.[12] A TNS nagy biológiai stabilitása alapján a többi darwini evolúció által érintett nukleinsavrendszerhez képest a TNS az új generációs terápiás aptamerek fejlesztésében fontos lehet.

A laboratóriumban fejlesztett TNS-polimeráz általi TNS-szintézis mechanizmusát röntgenkrisztallográfiával tanulmányozták az 5 fő nukleotid-hozzáadási lépés felvételéhez.[13] E szerkezetek nem tökéletes bejövő TNS-nukleozid-trifoszfát-felismerést mutatnak, így a jobban működő TNS-polimerázok létrehozásáért további irányított evolúciós kísérletek folynak. A TNS-reverztranszkriptáz biner szerkezete is ismert röntgenkrisztallográfiával, ez a szerkezeti plaszticitás fontosságát mutatja meg a templátfelismerésben.[14]

Előállítás szerkesztés

Funkcionálisan erősített TNS-aptamerek (treomerek) állíthatók elő a C-5 szénatomon aminosavszerű oldallánccal rendelkező uracilalapú nukleotidokkal.[15]

A TNS-polimerázok tNMP-k (treonukleotidok) segítségével is képesek TNS-t előállítani.[15]

A kémiai diverzitás és a funkció kapcsolata szerkesztés

Majumdar et al. 2023-as tanulmányukban a C-5 szénatomon aminosavszerű oldallánccal módosított citozin- és uracilalapú nukleotidokat használtak. Eredményeik alapján a kétszer módosult treomerek jobban kötöttek, mint az egyszer módosultak, ez alapján feltételezték, hogy a kétszer módosult treomerek a pirimidincsoportoknál számos funkciós csoporttal rendelkezhetnek.[15]

További XNS-ek előállítása szerkesztés

Biológiailag stabil TNS-kereten alapulva funkcionálisan erősített XNS-aptamerek állíthatók elő.[15]

DNS előtti világ szerkesztés

John Chaput, az irvine-i Kaliforniai Egyetem gyógyszerészeti professzora feltételezte, hogy a prebiotikus ribózszintézissel és a nem enzimatikus RNS-replikációval kapcsolatos problémák alapján korábbi genetikai rendszer lehetett az ősi földi körülmények között.[16] A TNS korai genetikai rendszer és az RNS prekurzora lehetett.[17] A TNS az RNS-nél egyszerűbb és 1 kezdőanyagból előállítható, az RNS-sel és az azzal komplementer szálaival oda-vissza adhat át információt. A TNS eltérő ligandumkötő tulajdonságokkal rendelkező harmadlagos szerkezetekbe állhat össze.[9]

Gyakorlati alkalmazás szerkesztés

Bár a TNS-kutatás még új, gyakorlati alkalmazása már megjelent. Darwini evolúcióra való képessége nukleázoknak való ellenállásával együtt a TNS-t fontos jelöltté teheti a nagy biológiai stabilitást igénylő diagnosztikai és terápiás alkalmazásokban. Ilyen például a bizonyos kismolekulás és fehérjecélpontokhoz kötő TNS-aptamerek evolúciója és az adott reakciót katalizáló TNSzimek (treozimek) fejlesztése. Ezenkívül a TNS fontos jelölt lehet a géncsendesítést igénylő RNS-terápiás alkalmazásokban. Például a TNS-t antiszenz-technológiai modellrendszerben is vizsgálták.[18]

Immunmoduláció szerkesztés

Egyes TNS-aptamerek bejuthatnak a citoplazmába, a PD-1/PD-L1-blokádon keresztül stimulálhatják az immunaktivitást.[1]

Jegyzetek szerkesztés

  1. a b Langlois NI, Ma KY, Clark HA (2023. március). „Nucleic acid nanostructures for in vivo applications: The influence of morphology on biological fate”. Appl Phys Rev 10 (1), 011304. o. DOI:10.1063/5.0121820. PMID 36874908.  
  2. a b Schöning KU et al. (2000). „Chemical etiology of nucleic acid structure: the a-threofuranosyl-(3'→2') oligonucleotide system”. Science 290, 1347-1351. o.  
  3. Eschenmoser A (1999). „Chemical etiology of nucleic acid structure”. Science 284, 2118–2124. o.  
  4. Dunn, Matthew R. (2015. április 1.). „DNA Polymerase-Mediated Synthesis of Unbiased Threose Nucleic Acid (TNA) Polymers Requires 7-Deazaguanine To Suppress G:G Mispairing during TNA Transcription” (angol nyelven). Journal of the American Chemical Society 137 (12), 4014–4017. o. DOI:10.1021/ja511481n. ISSN 0002-7863.  
  5. Culbertson, M. C. et al. (2016). „Evaluating TNA stability under simulated physiological conditions”. Bioorg. Med. Chem. Lett 26, 2418–2421. o.  
  6. Sau SP, Fahmi NE, Liao J-Y, Bala S, Chaput JC (2016). „A scalable synthesis of α-L-threose nucleic acid monomers”. J Org Chem 81, 2302–2307. o.  
  7. Larsen AC et al. (2016). „A general strategy for expanding polymerase function by droplet microfluidics”. Nat Commun 7, 11235. o.  
  8. Nikoomanzar A, Vallejo D, Chaput JC (2019). „Elucidating the Determinants of Polymerase Specificity by Microfluidic-Based Deep Mutational Scanning”. ACS Synth Biol 8, 1421–1429. o.  
  9. a b Yu H, Zhang S, Chaput JC (2012). „Darwinian evolution of an alternative genetic system provides support for TNA as an RNA progenitor”. Nat Chem 4, 183–187. o.  
  10. Mei H et al. (2018). „Synthesis and Evolution of a Threose Nucleic Acid Aptamer Bearing 7-Deaza-7-Substituted Guanosine Residues”. J Am Chem Soc 140, 5706–5713. o.  
  11. Rangel AE, Chen Z, Ayele TM, Heemstra JM (2018). „In vitro selection of an XNA aptamer capable of small-molecule recognition”. Nucleic Acids Res 46, 8057–8068. o.  
  12. Pinheiro VB et al. (2012). „Synthetic genetic polymers capable of heredity and evolution”. Science 336, 341–344. o.  
  13. Chim N, Shi C, Sau SP, Nikoomanzar A, Chaput JC (2017). „Structural basis for TNA synthesis by an engineered TNA polymerase”. Nat Commun 8, 1810. o.  
  14. Jackson LN, Chim N, Shi C, Chaput JC (2019). „Crystal structures of a natural DNA polymerase that functions as an XNA reverse transcriptase”. Nucleic Acids Res.  
  15. a b c d Majumdar B, Sarma D, Yu Y, Lozoya-Colinas A, Chaput JC (2023. október 25.). „Increasing the functional density of threose nucleic acid”. RSC Chem Biol 5 (1), 41–48. o. DOI:10.1039/d3cb00159h. PMID 38179195.  
  16. Chaput J: Simpler times: Did an earlier genetic molecule predate DNA and RNA?. ASU News . Arizona State University, 2012. január 8. (Hozzáférés: 2024. április 26.)
  17. Orgel LE (2000). „A simpler nucleic acid”. Science 290, 1306–1307. o.  
  18. Liu LS et al. (2018). „α-l-Threose Nucleic Acids as Biocompatible Antisense Oligonucleotides for Suppressing Gene Expression in Living Cells”. ACS Appl Mater Interfaces 10, 9736–9743. o.  

Fordítás szerkesztés

Ez a szócikk részben vagy egészben a Threose nucleic acid című angol Wikipédia-szócikk ezen változatának fordításán alapul. Az eredeti cikk szerkesztőit annak laptörténete sorolja fel. Ez a jelzés csupán a megfogalmazás eredetét és a szerzői jogokat jelzi, nem szolgál a cikkben szereplő információk forrásmegjelöléseként.

További információk szerkesztés